顕微鏡スライドの使用法

1. スミア法とは、スライドガラス上に材料を均一にコーティングする製膜法です。

塗抹標本には、単細胞生物、小藻類、血液、細菌培養液、動植物の遊離組織、精巣、葯などがあります。

(1) スライドはきれいでなければなりません。 (2) スライドは平らであること。 (3) コーティングは均一であること。 液滴をスライドの真ん中に右に適用し、メスの刃または爪楊枝でよく適用します。 (4) コーティングは薄くする必要があります。 別のスライドをプッシュシートとして使用し、コーティング液が滴るスライドの表面に沿って (2 つのスライド間の角度は 30 度 -45 度) 右から左にそっと押して、均一な薄い層をコーティングします。 . (5) 固定。 固定が必要な場合は、化学固定剤または乾燥（バクテリア）で固定できます。 (6) 染色。 バクテリアにはメチレンブルー、血液にはライ染色、時にはヨウ素ワイン。 染色液は表面全体を覆う必要があります。 (7)すすぎます。 吸収紙でブロットドライまたはベーキングドライしてください。 (8) シール。 長期保存用のカナディアンガムシール。

2. 打錠法とは、スライドガラスとカバーシートの間に生体材料を挟み、一定の圧力を加えて組織細胞を分散させる調製法です。

3. ローディング法とは、生体材料全体を封入してスライド標本を作製する方法であり、この方法により一時的または永久的な固定が可能です。

ローディング材料には以下が含まれます：クラミドモナス藻類、スポンジ、アメーバ、線虫などの微視的生物。 ヒドラ、植物の葉の表皮。 昆虫の翅、足、口器、ヒト口腔上皮細胞など

ローディング方法の製造に注意を払う必要があります。 (1) スライドを保持するときは、平らにするか、プラットフォームに置くことに注意する必要があります。 滴下する場合、水の量は、カバースリップで覆われるのに十分な量にする必要があります。 (2) 解剖針や鉗子で材料が重ならないように広げ、同一平面上で平らにする。 (3) 封入する際は、気泡が入らないように片側からゆっくりと水滴をかぶせてください。 (4) 染色の際は、カバーガラスの片面に染色液を一滴垂らし、吸収紙で反対側から吸引し、カバーガラスの下の標本を均一に着色します。 着色後、同様の方法で水を一滴垂らし、染色液を吸い出し、顕微鏡で観察します。

4. スライスとは、生物を薄く切り出したスライド標本です。

要件に応じて、ブレードでフリーハンド セクションを実行したり、組織ブロックをパラフィンまたはコロジオンに埋め込んだり、低温で凍結してミクロトームでスライスしたりできます。 光学顕微鏡観察用に5～10ミクロンのシートにカット。 エポキシ樹脂またはメタクリル酸包埋組織ブロックで切断された厚さ 20 ～ 50 ナノメートルの超薄切片は、電子顕微鏡下での観察用に特別に設計されています。 根の先端や茎など、一般的な教育に使用されるセクションは、一般にパラフィン セクションと呼ばれます。